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Q1.引物是如何合成的？

目前引物合成基本采用固相亞磷酰胺三酯法。DNA合成儀有很多種,無論采用什么機器合成，合成的原理都相同，主要差別在于合成產率的高低，試劑消耗量的不同和單個循環(huán)用時的多少。

（1）    去保護：加入Deblocking脫去堿基上5'- OH的保護基團DMT，獲得游離的5'- OH；

（2）    耦合：同時加入活化劑和新的堿基，新的堿基5'-OH仍然被DMT保護，3'端被活化與溶液中游離的5'-OH發(fā)生耦合反應；

（3）    封閉：耦合反應中極少數(shù)5'- OH沒有參加反應，用封閉試劑終止其后繼續(xù)發(fā)生反應；

（4）    氧化：加入氧化劑使其由核苷亞磷酸酯形成更穩(wěn)定的核苷磷酸酯。

Q2.引物合成如何處理？

切割與脫保護基：將合成好的寡核苷酸鏈從支持物上化學切割下來。常用新鮮的濃氨水來裂解CPG與初始核苷之間的酯鍵。斷裂下來的寡核苷酸帶有自由的3’羥基。

純化：根據所合成寡核苷酸的組成和應用來選定純化的方法。常用的純化方法有：C18、OPC、PAGE和HPLC。

定量：根據寡核苷酸在260nm處的紫外吸收來定量。

儲存：分裝抽干。

Q3.合成的引物5’端是否有磷酸化？

合成的引物5’為羥基，沒有磷酸基團。如果需要您可以用多核苷酸激酶進行5’端磷酸化，或者要求我們合成時直接在5’或3’端進行磷酸化，需要另外收費。

Q4.需要什么級別的引物？

根據實驗需要，確定訂購引物的純度級別。

Q5.需要合成多少OD數(shù)？

根據實驗目的確定。一般PCR擴增，2 OD引物，可以做500-1000次50ul標準PCR反應。如果是做基因拼接或退火后做連接，1 OD就足夠了。

Q6.如何計算引物的濃度？

引物保存在高濃度的狀況下比較穩(wěn)定。一般情況下，我們建議將引物的濃度配制成100pmol/ul，稱為保存濃度，而引物的工作濃度一般配制成10-50pmol/ul。加水的體積（微升）可直接參照合成報告單上推薦的體積，也可按下列方式計算：

V （微升）= OD數(shù)x 33 x 10000 /引物的分子量

引物的分子量可以從合成報告單上獲得。注意：1 OD₂₆₀= 33 ug/ml。

溶解前您需要核對合成報告單和引物標簽上的引物OD數(shù)是否一致。如果不一致，請和我們。我們可以根據生產記錄查到實際產量是多少。

Q7.如何計算引物的Tm值？

引物設計軟件都可以給出Tm，與引物長度、堿基組成及所使用緩沖夜的離子強度有關。

長度為25base以下的引物，Tm計算公式為：Tm = 4℃（G + C）+ 2℃（A + T）

對于更長的寡聚核苷酸，Tm計算公式為：

Tm = 81.5 + 16.6 x Log10[Na+] + 0.41 （GC%） – 600/size^＊

＊公式中，Size =引物長度。

Q8.引物（含修飾）的分子量是如何確定的？

非修飾的引物的分子量（MW）在隨引物提供的報告單上可以找到。如果需要估計一個引物的分子量按每個堿基的平均分子量為324.5，引物的分子量=堿基數(shù) x堿基的平均分子量，或按下列公式計算MW= （NA * WA） + （NC * WC） + （NG * WG） + （NT * WT） +（Nmod * Wmod）＋（Nx * ）+（ NI* WI） +16* Ns–62.

NA, NG, NC, NT, NI分別為引物中堿基A或G或C或T或I的數(shù)量，WA, WG ,WC, WT, WI分別為引物中堿基A或G或C或T或I的分子量，Nmod，Wmod分別為修飾基團的數(shù)目和分子量。對于混合堿基的分子量為混合堿基的分子量總合除以混合數(shù)，例如G+A混合的分子量為（313.21+329.21）/2 = 321.21。Ns為硫代數(shù)目，硫代每個位置增加分子量16。

常規(guī)堿基分子量

常規(guī)修飾基團分子量

Q9.如何溶解引物？

干燥后的引物質地非常疏松，開蓋前瞬時離心一下，或管垂直向上在桌面上敲敲，將引物粉末收集到管底。根據計算出的體積加入去離子無菌水或TE（pH8.0）緩沖液，室溫放置幾分鐘，振蕩助溶，離心將溶液收集到管底。溶解引物用的水一般不要用蒸餾水，因為有些蒸餾水的pH值比較低（pH4-5）,引物在這種條件下不穩(wěn)定。

Q10.如何保存引物？

引物合成后，經過一系列處理和純化步驟，旋轉干燥而成無色或白色絮狀干粉。

干 粉：運輸時常溫運輸，-20℃可以保存一年。

儲存液：配好后分裝成幾管，避免反復凍融，-20℃可以保存半年。

工作液：常規(guī)使用，4℃保存，也可-20℃保存，但應避免反復凍融。

修飾熒光引物：需要避光保存，盡快使用為宜。

Q11.引物定量不準是怎么回事兒？

我們偶爾收到用戶投訴定量不準的報告，出現(xiàn)這種情況的可能性有：

（1）定量錯誤、分裝錯誤、引物抽干或收樣過程中意外丟失。這種可能性有，但是很少，因為作為專業(yè)的引物合成公司，我們的生產人員都是經過嚴格的專業(yè)培訓，這種錯誤是要求謹慎避免甚至杜絕的。一般情況下，引物都有留樣備份，接到用戶投訴后，我們都會找出留樣重新定量，一般都沒有問題，如確實存在問題，則可安排重新準備一份。

（2）系統(tǒng)誤差，我們認為10%左右為允許誤差。使用過程中，引物工作濃度范圍很寬，定量上的少許偏差不影響實驗。

（3）用戶收到引物干粉時，打開引物管蓋前沒有離心或其他誤操作導致引物干粉部分丟失。

（4）用戶沒有能夠正確理解引物OD數(shù)的含義，沒有能夠正確使用分光光度計，特別是使用微量測定；用戶沒有將OD讀數(shù)，正確地轉換成母液中OD數(shù)。這種情況比較常見。

  例如，驗證標2OD引物量是否準確，簡單的做法是：加入1ml水，*溶解混勻后，取100ul,加入900ul水，用光徑為1cm的石英比色杯，波長260nm,此時光吸收的讀數(shù)為0.2。

Q12.zui長可以合成多長的引物？

我們合成過100base的引物，但是產率很低。除非需要，建議合成片段長度不要超過80base。引物越長，出現(xiàn)問題的概率就越大，按照目前的引物合成效率，大于80base的粗產品，全長引物的百分比不高，后續(xù)處理還有丟失很多，zui后的產量很低。

Q13.為什么修飾引物的產量要比一般引物低，價格要高?

主要因為是修飾單體穩(wěn)定性較差，偶連時間長，效率低，zui后得到的產量自然低于一般的引物。修飾引物通常需要PAGE或HPLC純化，純化過程損失大。修飾引物使用的原料是一般引物原料的幾百倍，所以產品的價格也高。

Q14.引物片段退火后不能連接到載體上是什么問題？

連接反應需要引物的5’磷酸基團。如果需要將合成的引物退火直接連接相應的載體上，引物需要磷酸化。磷酸化的產物如果還不能連接載體上，需要檢查載體的酶切效果，需要改善引物退火的條件。SiRNA分子具有特殊的對稱結構，退火的難度較大，退火時需要提高退火溫度。

Q15.如果測序發(fā)現(xiàn)引物突變，是否有補償？該如何處理？

如果出現(xiàn)測序發(fā)現(xiàn)引物位置堿基錯誤的情況，我們可以免費重合一次，沒有其他任何補償或賠償，不承擔其他連帶責任，這是行規(guī)。原因我們在前面已提到，化學合成效率不可能達到100%。

如果遇到這種情況，首先和我們，我們會檢查合成序列是否和原始訂單一致，如果確認引物合成序列沒有輸錯，我們建議重新挑取克隆測序，您可能會找到正確克隆的。根據我們經驗，40個堿基以下的引物，測1-2個克隆就可以了；40個以上的特別是用于全片段拼接合成的，就需要多測一些了。一般情況下，每個克隆突變的位點都不一樣，正確的總是有的，就是如何找到它。您也可以要求我們將引物免費重合一次，不過重合的引物和*次的引物一樣，都可能含突變，不會因為重合的引物就減少您的遇到問題的幾率?；蚱唇舆^程中，如果發(fā)現(xiàn)一段區(qū)域突變點不多，就多測幾個，否則就重合一下引物。

根據全基因合成的數(shù)據，我們的引物能做到2000個堿基的片段，取三個克隆，其中至少有一個是正確的。

Q17.為什么引物的OD₂₆₀/OD₂₈₀小于1.5？

需要指出的是OD₂₆₀/OD₂₈₀的比值不能用來衡量引物的純度。OD₂₆₀/OD₂₈₀的比值過低一般是由于引物中C/T的含量比較高所致。下表是一個20base同聚體引物的OD₂₆₀/OD₂₈₀的比值，清楚表明OD₂₆₀/OD₂₈₀的比值與引物的堿基組成密切相關。

Q18.同樣的OD用PAGE檢測，EB染色為什么深淺不一？

通?？梢杂肊B染色的方法來判斷雙鏈DNA的量（如質粒DNA），因為EB可以嵌合到雙鏈DNA中。而合成的單鏈DNA，由于堿基組成不同，形成二級結構的可能性不同，EB的染色程度也會有差異，比如Oligo（dT）等不形成二級結構，EB染色效果就非常差。所以不要用EB染色的方法來定量，而用紫外分光光度計檢測。

Q19.如何檢測引物的純度？

實驗室方便的做法是用PAGE方法。使用加有7M尿素的16%的聚丙烯酰胺凝膠進行電泳。取0.2-0.5OD的引物，用尿素飽和液溶解或引物溶液中加入尿素干粉直到飽和，上樣前加熱變性（95℃,2mins）。加入尿素的目的一是變性，二是增加樣品比重，容易加樣。600V電壓進行電泳，一定時間后（約2-3小時），剝膠，用熒光TLC板在紫外燈下檢測帶型，在主帶之下沒有雜帶，說明純度是好的。如果條件許可，也可以用銀染方式染色。

Q20.已經溶解的引物，為什么原先使用正常，而過一段時間再使用就不好了？

如果您溶解引物的水pH過低或污染了菌或核酸酶，會使引物降解。使用時沒有充分解凍混合，液體不均勻也可能會造成引物加入量不準確。建議分裝引物，避免反復凍溶。建議使用10mM Tris pH7.5緩沖液溶解引物，因為有些蒸餾水的pH值比較低（pH4-5）,引物在這種條件下不穩(wěn)定。還有一種可能性是引物沒有問題，而是PCR使用材料特別是模板的質量與先前使用的不*一致。

Q21.引物是我們設計的，現(xiàn)在您擴不出來，我們要負責嗎？

不承擔相關責任。我們?yōu)橐恍嶒灲涷灢蛔愕目蛻?，免費設計引物，提供一定的便利。我們遵循一般的引物設計原則設計好引物之后都會發(fā)給您確認，而后再安排合成并保證引物質量。但是設計的引物是否能夠滿足您的實驗要求，一定擴增出您需要的基因片段，誰也不能100%保證。

Q22.PCR擴增無目的片段是引物質量有問題嗎？

PCR擴增無目的條帶或者非特異性擴增，影響因素是多方面的，需要耐心地分析，如模板結構與質量、反應條件、引物設計等等。當今發(fā)展出各色各樣的PCR擴增技術，各色各樣的高溫聚合酶，就是來解決PCR擴增中遇到的擴不出，擴增效率低的問題。如巢式PCR就是擴增拷貝數(shù)很低的基因片段。通過提高模板質量、優(yōu)化反應條件等方面找到對策，或者有必要時重新設計引物，在實驗時設置對照來判定原因。如果您懷疑引物的問題，請您首先測定您溶解的引物的OD值，看實驗時加入的引物量是否正確。如果量是正常的，請您告訴我司您的引物編號，我們會復查留存樣品。如不明原因，我們免費為您重新合成一次。如果仍然不能擴增，請您查找其它原因。多數(shù)情況下我們復檢引物質量都沒有問題，因為我們在引物出售前已經嚴格把好質量關。

Q23.常用熒光染料參數(shù)

Q24.引物的質量是不是跟序列有關？

四種堿基的性質和各自保護基的性質都有差別。所以合成難度是不一樣的。難度zui大的當屬GC重復多的和序列中還有多個連續(xù)的G的引物。尤其對于后者，國內公司一般都做不了20個G以上的引物。實驗證明，如果引物中有超過三個連續(xù)G的結構，傳統(tǒng)方法得到的產物質量就會開始下降。而且目前通用的脫鹽、OPC和PAGE方法都無效。

我們擁有的HEPD技術能夠克服高GC或者高G含量引物的合成和純化障礙，對普通引物、高GC引物和無論長短的oligo d（G）都能得到同樣的非常好的結果